





蛋白質(zhì)雙向電泳實(shí)驗(yàn)流程
1.三氯yi酸-bing酮沉淀法提取蛋白
2.雙向電泳分離待測(cè)樣品
(1)一相等電聚焦前處理按照所用儀器的廠商提供操作手冊(cè)進(jìn)行。蛋白質(zhì)上樣濃度不要超過10mg/mL,否則會(huì)造成蛋白質(zhì)的聚集或沉淀。
(2)等電聚焦完畢后(約需24hr),若不立即進(jìn)行第二相電泳,膠條可夾在兩層塑料薄膜中于-70℃保存數(shù)月。
(3)等電聚焦好的膠條按廠商提供的操作手冊(cè)平衡兩次。平衡完畢后,于電泳儀上用12.5%SDS-PAGE凝膠進(jìn)行電泳分離。儀器設(shè)置為2.5W/膠 45min,15W/膠 5-8hr,20℃。
3.銀染法對(duì)凝膠進(jìn)行染色
(1)固定(2)清洗(3)增敏(4)清洗(5)染色(6)清洗(7)顯影(8)定影(9)水洗
3.凝膠掃描及圖像分析
(1)圖像掃描:凝膠染色后采用Image scanner以300dpi,16-bit模式(65536灰階)進(jìn)行掃描。
(2)圖像分析:掃描完畢后,凝膠繼續(xù)置于1%yi酸中于4℃保存。掃描后的圖像用ImageMaster 2D Platinum software軟件進(jìn)行分析。分析按照軟件廠商提供的說明書進(jìn)行。以***小點(diǎn)面積30,平滑度2為主要參數(shù)***大限度檢測(cè)蛋白質(zhì)點(diǎn)。以目標(biāo)蛋白質(zhì)3個(gè)重復(fù)具有相同趨勢(shì),目標(biāo)蛋白質(zhì)相鄰位點(diǎn)的相對(duì)一致性,至少2個(gè)重復(fù)有2倍以上差異作為判定差異表達(dá)蛋白質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)。

轉(zhuǎn)錄組測(cè)序
轉(zhuǎn)錄組即某個(gè)物種或特定細(xì)胞在某一功能狀態(tài)下產(chǎn)生的RNA的總和,商洛pcr,是研究細(xì)胞表型和功能的一個(gè)重要手段。與***組不同的是,轉(zhuǎn)錄組的定義中包含了時(shí)間和空間的限定。同一細(xì)胞在不同的生長(zhǎng)時(shí)期及生長(zhǎng)環(huán)境下,其***表達(dá)情況是不相同的。轉(zhuǎn)錄組測(cè)序(RNA-Seq)是指利用第二代高通量測(cè)序技術(shù)進(jìn)行cDNA測(cè)序,快速地獲取某一物種特定qi官或***在某一狀態(tài)下的轉(zhuǎn)錄本。相對(duì)于傳統(tǒng)芯片而言,RNA-Seq無需預(yù)先設(shè)計(jì)探針,即可對(duì)物種的細(xì)胞類型的轉(zhuǎn)錄組進(jìn)行檢測(cè),能夠提供較的數(shù)字化信號(hào),更高的檢測(cè)通量以及更廣泛的檢測(cè)范圍,是目前深入研究轉(zhuǎn)錄組復(fù)雜性的良好工具。
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